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蛋白質(zhì)純化分離-材料的預(yù)處理
  • 發(fā)布日期:2018-03-16      瀏覽次數(shù):1540
    • 蛋白質(zhì)在分子生物學(xué)中的分類,大體上可分為天然蛋白和重組蛋白。提取天然蛋白和構(gòu)建重組蛋白都需要先確定生物原材料,如植物材料主要以植物的葉,胚,果實(shí)和根莖等為主;動物通常是選用實(shí)驗(yàn)動物的器官和組織;而微生物則是微生物菌體本身或發(fā)酵液。從原則上講,任何一種自然界中存在或不存在的蛋白質(zhì)都可以被外源表達(dá)出來,像原核蛋白表達(dá)就是以大腸桿菌(E.coli)為宿主菌表達(dá)克隆基因,在原核表達(dá)體系中,重組蛋白的含量比雜蛋白的含量高的多,所以選擇和設(shè)計合適的分離純化方案對于重組蛋白表達(dá)純化的下游實(shí)驗(yàn)就顯得尤為重要。

      在提取和分離蛋白時有以下幾點(diǎn)需要注意:

      1)蛋白質(zhì)提取應(yīng)盡量多的提取出活性蛋白,避免各因素導(dǎo)致目的蛋白失活;

      2)選用不同的溶劑提取分離蛋白質(zhì)(大多數(shù)蛋白溶于水,稀鹽,稀酸等,少數(shù)與脂類結(jié)合的蛋白則溶于乙醇等有機(jī)溶劑);

      3)提取蛋白一般在低溫環(huán)境中操作,避免蛋白質(zhì)在提取過程中降解(可加入蛋白酶抑制劑,如PMSF、EDTA、antipain和leupeptin等);

      4)提取時緩沖液的用量通常是原材料的1~5倍,提取時注意均勻攪拌,這樣有利于蛋白的溶解(緩沖液通常選用PH≈7,0.15mol/L磷酸鹽緩沖液或PH7.5,0.1mol/LTris-Hcl緩沖液);

      5)蛋白質(zhì)提取常用各種水溶液,一般是在偏離等電點(diǎn)0.5pH以上,此時蛋白的溶解度增加;

      6)用稀酸提取等電點(diǎn)在堿性范圍內(nèi)的蛋白質(zhì),用稀堿提取等電點(diǎn)在酸性范圍內(nèi)的蛋白,盡可能提高目的蛋白在提取液中的溶解度。

      不同材料的處理

      1.植物材料的預(yù)處理

      植物體內(nèi)通常存在著為數(shù)眾多的天然蛋白,提取時通常選用一些器官為主要原料。但植物提取蛋白時存在一些特殊問題,導(dǎo)致蛋白質(zhì)的得率較動物和微生物的要低。
      因?yàn)橹参锊牧现谐康牡鞍淄膺€含有大量的淀粉,纖維素和果膠等雜志,所以初步的均質(zhì)化處理需要在大量緩沖液中進(jìn)行,初步過濾后得到低濃度蛋白,之后需要進(jìn)行硫酸銨沉淀和PEG沉淀進(jìn)行分離,分離后的蛋白可與其他蛋白一樣,采用一般的蛋白純化處理。

      2.動物材料的預(yù)處理

      動物原材料組織中含有豐富的目的蛋白,根據(jù)蛋白質(zhì)所處的不同位置(胞內(nèi),胞外,亞細(xì)胞器等),應(yīng)選用不同的組織破碎方式。對于少量組織,可使用小型均質(zhì)器,大量組織則采用搗碎機(jī)快速搗碎方法。對于軟組織,可使用玻璃均質(zhì)器。組織均質(zhì)化后,將不同亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)內(nèi)的蛋白酶釋放到溶液中,使之與目的蛋白接觸并降解,zui后進(jìn)行純化處理。
      注意:均質(zhì)化時間盡可能短,減少不必要的蛋白質(zhì)水解變性
      在4℃預(yù)冷的緩沖液中進(jìn)行均質(zhì)化處理和后期分離操作,有助于降低蛋白質(zhì)水解在緩沖液中添加蛋白酶抑制劑控制蛋白質(zhì)水解

      3.微生物材料的預(yù)處理

      微生物可產(chǎn)生多種天然蛋白和重組蛋白,提取天然蛋白,首先要對大量菌株篩選獲得高產(chǎn)菌株,再進(jìn)行誘變育種分離產(chǎn)量更高的正突變菌株,zui后通過基因工程技術(shù)提高內(nèi)源微生物蛋白產(chǎn)量。而重組蛋白的提取相對來說就簡單地多,微生物可以通過發(fā)酵的方式,短時間內(nèi)大量培養(yǎng),從而分離出大量可純化的目的蛋白。與植物和動物處理方法相比較,微生物蛋白通常比來源于植物和動物的相同蛋白質(zhì)要更加穩(wěn)定,也更易于遺傳學(xué)操作。只要篩選出正確的培養(yǎng)條件,就可以獲得大量的特定蛋白質(zhì)菌體。

      4.細(xì)菌的裂解

      細(xì)胞的破碎裂解是指用物理、化學(xué)、酶或機(jī)械等方法破壞細(xì)胞壁或細(xì)胞膜,從而將胞內(nèi)物質(zhì)(目的蛋白)釋放到周圍環(huán)境的過程。針對不同用途和類型的細(xì)胞壁發(fā)展了多種方法,目前常用方法大體上可分為機(jī)械法和非機(jī)械法倆類,常用的機(jī)械破碎法有:高溫珠磨法;高壓勻漿;超聲破碎法。而非機(jī)械法包括滲透壓沖擊法;凍融破碎法;酶溶法;化學(xué)破碎法等。下面介紹在實(shí)驗(yàn)室研究中應(yīng)用較為廣泛的酶溶法和超聲破碎法。

      酶溶法

      常用的溶解酶有溶菌酶;β-1,3-葡聚糖酶;β-1,6-葡聚糖酶;蛋白酶;殼多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要作用于細(xì)菌類,而其他幾種酶對酵母作用較為顯著。

      主要步驟為:

      1、4℃,5000rpm離心15min,收集誘導(dǎo)表達(dá)的細(xì)菌培養(yǎng)液(100mL)。棄上清,每克濕菌內(nèi)加3mL
      裂解緩沖液,懸浮沉淀;

      2、沉淀稱量,每克菌內(nèi)加8mLPMSF及80mL溶菌酶,攪拌20min;邊攪拌邊每克菌加4mg脫氧膽酸
      (低溫中進(jìn)行);

      3、37℃,玻棒攪拌,至溶液粘稠時每克菌內(nèi)加20mLDNaseI。室溫放置至溶液不再粘稠。

      超聲破碎法

      聲頻為15-20kHz的超聲波在高強(qiáng)度聲能輸入下可以對細(xì)胞進(jìn)行破碎,在處理少量樣品時具有操作簡便,重復(fù)性好,節(jié)省時間,液體量損失較少等優(yōu)勢,同時還可對染色體DNA進(jìn)行剪切,降低液體的粘稠度。

      主要步驟為:

      1、收集1L誘導(dǎo)表達(dá)的工程菌,40℃,5000rpm離心,15min;棄上清,每克濕菌加3mLTE緩沖液;

      2、按超聲處理儀廠家提供的功能參數(shù)進(jìn)行破菌;10000g離心,15min,分別收集上清液和沉淀;

      3、分別取少量上清和沉淀,加入凝膠電泳加樣緩沖液,進(jìn)行SDS-PAGE檢測。

      注意事項(xiàng):超聲破碎與聲頻、聲能、處理時間、細(xì)胞濃度、菌種類型等因素有關(guān),應(yīng)根據(jù)具體情況掌握;超聲波破菌前,標(biāo)本經(jīng)3-4次凍溶后更容易破碎。

       

      案例—從大腸桿菌中提取誘導(dǎo)表達(dá)的(His)6-X

      簡介

      大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)操作簡便,能夠獲得優(yōu)化的表達(dá)質(zhì)粒。而組氨酸標(biāo)簽(His)6是常用的重組蛋白純化標(biāo)簽。

      材料

      感受態(tài)細(xì)胞、表達(dá)載體、LB培養(yǎng)基、氨芐青霉素、IPTG、蛋白酶抑制劑、Ni-NTA親和層析柱、超聲波
      破碎儀、高速冷凍離心機(jī)、紫外分光光度計、結(jié)合緩沖液(50mmol/LTris,PH7.9,500mmol/LNaCl,5mmol/L咪唑)、洗脫緩沖液(50mmol/LTris,PH7.9,500mmol/LNaCl,500mmol/L咪唑)

      方法

      1)采用RT-PCR擴(kuò)增得到目的基因X,構(gòu)建到表達(dá)載體上;

      2)用構(gòu)建質(zhì)粒表達(dá)轉(zhuǎn)化菌株,LB平板37℃培養(yǎng)過夜;

      3)LB平板上挑取一單菌接入5mLLB培養(yǎng)基(100ug/mLAmp),37℃培養(yǎng)3~5h;

      4)將5mL菌液接入1LLB液體培養(yǎng)基中(100ug/mLAmp),37℃培養(yǎng)至OD60≈0.6,加入0.3mmol/L的
      IPTG,16℃誘導(dǎo)16h;

      5)將培養(yǎng)好的菌液放入離心機(jī)中,5000r/min離心10min,棄去上清,收集菌體,離心后的菌體沉淀懸浮于25mL結(jié)合緩沖液中;

      6)將懸浮菌液裝在50mL玻璃燒杯中,加入適量蛋白抑制劑(10uL的10mg/mLantipain),冰浴放置;

      7)超聲破碎,每個循環(huán)26次,超聲6s,間隔5s,根據(jù)破碎效果共2~4個循環(huán),破碎后的菌體4℃18000r/min離心30min,上清液保持在4℃;

      8)Ni柱先用結(jié)合緩沖液平衡,然后上樣,結(jié)合30min后,每5~10min攪拌一次,靜置流干;

      9)用2~3倍柱體積結(jié)合緩沖液清洗非特異性結(jié)合蛋白,再加入15mL洗脫緩沖液洗脫,可分倆次加入以
      增加洗脫效率;

      10)SDS-PAGE檢測初步純化效果,進(jìn)行下一步純化步驟。

      問題分析及解決方案

      1.目的蛋白得不到可溶性表達(dá)或表達(dá)量很低

      原核蛋白表達(dá)過程中,選擇構(gòu)建合適的表達(dá)載體需要考慮三個因素:表達(dá)載體、表達(dá)菌株、表達(dá)誘導(dǎo)條件。針對這三個方面對表達(dá)實(shí)驗(yàn)進(jìn)行調(diào)整,優(yōu)化表達(dá)條件;考慮更換不同的表達(dá)菌株(BL21、Rosetta、OrigamiPLysS等);表達(dá)載體可換成帶有其他有助于可溶性蛋白生成的標(biāo)簽載體(GST,MBP)。

      2.表達(dá)出來的蛋白易降解

      首先要保證原核蛋白表達(dá)的操作過程處于低溫環(huán)境;操作過程中適當(dāng)?shù)难a(bǔ)加一些蛋白酶抑制劑,盡量縮短提取時間;洗脫的目的蛋白溶液于4℃短暫保存,不易時間過長;注意超聲波的處理?xiàng)l件,判斷是否由超聲波處理過于劇烈而造成的降解。

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